С целью соблюдения требований Правил ПБ 03-576-03 «Правила устройства и безопасной эксплуатации сосудов, работающих под давлением» и подготовки к лицензированию на новый срок  по работе с ПБА I—IVгрупп патогенности. Был заключен договор с бюджетным образовательным учреждением дополнительного профессионального образования «Республиканский центр повышения квалификации и профессиональной переподготовки специалистов  здравоохранения УР»  на обучение по теме: «Обслуживание сосудов с быстросъемными крышками (стерилизаторы медицинские паровые, баллоны с газами вместимостью до 100 л)», которое проходило в период с 10.02 по 21.02 2014 г. на базе БУ УР «УВДЦ».

       Обучение  прошли 19 сотрудников, работающих на автоклавах, с баллонами и обслуживающий персонал отдела материально-технического обеспечения.  Слушатели в процессе обучения   пополнили теоретические знания по теплотехнике, процессам и методам стерилизации, контроля стерильности, техники безопасности при работе, требованиям к помещению и установке стерилизаторов , а также  прошли практическое обучение работе на автоклавах и работе с баллонами.

      Все  успешно сдали зачеты по теории и практике и получили  регистрационные удостоверения  о прохождении курсов повышения квалификации.

Гл. метролог ОМ и ИО                                                    З.Л.Холмская

Воспроизводительная способность и высокая продуктивность животных обусловлены интенсивным течением процессов обмена веществ в клетках, органах и тканях. Для обеспечения оптимального, физиологически обоснованного биосинтеза белков, энергии, роста, развития организма, производства молока, мяса и других продуктов животноводства высокого качества необходимо обязательное условие — в организм животных с рационом должны поступать все без исключения питательные вещества, участвующие в процессах обмена, в биологически требуемых количествах и соотношениях. Важное влияние на интенсивность процессов обмена веществ оказывают условия содержания животных, такие как микроклимат, моцион.

При несоответствии условий кормления и содержания физиологическим потребностям продуктивных животных в организме возникают глубокие нарушения всех видов обмена веществ, которые проявляются снижением резистентности продуктивности, клинически выраженным заболеванием взрослых животных и молодняка.

При биохимических исследованиях крови в последнее время часто наблюдается снижение уровня глюкозы в крови животных.

Гипогликемия — сижение уровня содержания глюкозы в крови. Отмечают у животных при длительной, усиленной мышечной нагрузке, нарушении функции коры, надпочечников, передней доли гипофиза, гипертрофии поджелудочной железы, поражении печени, переохлаждении новорожденного молодняка, кетозе, длительном голодании. Часто наблюдается при недостатке в кормах легкоусвояемых углеводов, большой потребности в глюкозы при высококонцентратном типе кормления, преобладание в рационе кислых кормов.

У коров гипогликемию наблюдают во время обильной лактации, так как молочная железа затрачивает большое количество глюкозы на синтез молочного жира. Кроме того, при повышенной продуктивности коров увеличиваются энергетические затраты и использование глюкозы, как основного энергетического вещества, что в еще большей степени способствует развитию данного заболевания. При гипогликемии обычно обедняется печень гликогеном, увеличивается поступление жира в печень и использование его в больших количествах для энергетических целей. Вследствие этого в крови повышается содержание ацетоуксусной, бета-оксимасляной кислот и ацетона (гиперкетонемия), они начинают выделяться с мочой (кетонурия), и возникает в большей или меньшей степени явление токсикоза.

При нормальном состоянии организма уровень глюкозы в крови у коров колеблется в пределах 40-60 мг%. Концентрацию глюкозы в крови регулируют продукты 30-40 генов, их взаимодействие обеспечивает относительно постоянный уровень глюкозы, несмотря на нерегулярное и крайне неравномерное потребление продуктов, являющихся ее источниками. У жвачных практически все углеводы, поступающие с пищей, расщепляются до низших (летучих) жирных кислот, которые заменяют глюкозу в качестве источника энергии в тканях при нормальном питании.

Определение содержания глюкозы в крови – это один из тех показателей, без которого не обходится исследование крови. Современная ветеринарная медицина владеет несколькими методами, способными определять глюкозу. Некоторые из них практические престали использоваться, поскольку они небезошибочны, весьма токсичны и неудобны в использовании. Ферментативные методы, включая глюкозооксидазный, чаще всего  используется в ветеринарных лабораториях для проведения исследований. В качестве биологического материала используется как сыворотка крови, так и цельная кровь.

Для получения достоверных результатов, определение глюкозы рекомендуется проводить сразу после получения сыворотки, так как скорость снижения концентрации глюкозы в цельной крови — приблизительно 7 % в час. Глюкоза в сыворотке устойчива в течение двадцатичетырех часов при 2-8  C. Поэтому рекомендуется в день взятия крови пробы сразу отправлять в лабораторию на исследование.

      Орнитоз — это инфекционное заболевание  птиц, животных и человека. Оно вызывается внутриклеточным вирусом chlamydophila psittaci. Главными носителями вируса и источником заражения являются птицы. Данное заболевание известно на всех континентах Земли.  В настоящее время насчитывается 465 видов птиц, у которых обнаружен орнитоз. Из пернатых болеют утки, индейки, гуси, куры, голуби, попугаи, воробьи, фазаны, чайки и др. Проявляется болезнь у разных видов птиц неодинаково, к этой болезни очень предрасположено семейство попугаевых, поэтому орнитоз называют ещё пситтакозом или попугайной болезнью (от лат. psittacus — попугай).  Молодые птицы более восприимчивы, чем взрослые.

Больная птица является источником инфекции, вирусоносителем, выделяя микроорганизмы при чихании, кашле, с пометом. Инфекция проникает в организм через слизистую оболочку дыхательных путей и желудка, вызывая заболевание, если высохший помет больной птицы, пушинки, слущенный эпителий кожи попадают  в дыхательную систему и пищеварительный тракт здоровой птицы. Птица, переболевшая орнитозом, является распространителем вируса.

          Источниками заражения орнитозом у людей являются дикие и домашние птицы: утки, индюшки, попугаи, канарейки, волнистые попугайчики и городские голуби. Заражённость городских голубей и серых ворон достигает 30-80%. Самые большие вспышки заболевания происходят в конце лета — в начале осени. Наиболее подвержены заболеванию лица, постоянно контактирующие с птицами: работники птицефабрик, мясокомбинатов, заводчики птиц и др. Болеют преимущественно люди среднего и старшего возраста, у детей болезнь наблюдается реже. Больные орнитозом не представляют опасности для окружающих. Человек заражается чаще всего через слизистые покровы дыхательной системы при вдыхании пыли, содержащей хламидии (высохшая взвесь помета птиц, а также выделения из клюва, испачканные частицы пуха и др.).

           БУ УР «УВДЦ» проводит лабораторную диагностику на данное заболевание.  Самым чувствительным  методом является идентификация хламидий по специфическому ферменту молекулы ДНК в патологическом и биоматериалах (ПЦР, полимеразная цепная реакция).

С начала 2014 года происследовано 20 проб материала. Из них выявлена одна положительная  проба от голубя, подобранного на улице г. Ижевска.

БУ УР «УВДЦ» рекомендует жителям г. Ижевска УР исключить контакты с больной или ослабленной птицей, которая может являться источником особо опасного заболевания, общего для человека и животных.

Вирусные болезни свиней всегда были объектом пристального внимания ветеринарных специалистов, так как они вызывают  массовое заболевание и падеж восприимчивого поголовья.

Особо экономически опасны такие высококонтагиозные заболевания, как африканская чума свиней, классическая чума свиней, которые   относятся к карантинным.  Ими болеют свиньи независимо от возраста, пола и времени года.

Африканская чума свиней, классическая чума свиней — заболевания, характеризующиеся лихорадкой, геморрагическим диатезом, абортами, как правило быстрым течением и высокой летальностью. Возбудители классической и африканской чумы свиней разнообразны по вирулентности и могут вызывать различные формы и течения болезни – сверхострое, острое, подострое и хроническое. Поэтому отличить африканскую чуму от классической на основании клинико- эпизоотологических данных и патоморфологических изменений очень трудно.

К экономически затратным заболеваниям относятся также  парвовирусная инфекция  и репродуктивно- респираторный синдром свиней.

Данные заболевания клинически проявляются чаще у супоросных свиноматок прохолостами, малочисленными пометами, рождением мумифицированных плодов, абортами. Сходство клинических и патологоанатомических признаков парвовирусной инфекции и репродуктивно- респираторного синдрома  свиней чрезвычайно затрудняет постановку диагноза.

Для дифференциации  всех этих заболеваний важна своевременная и точная диагностика, которая основывается на обнаружении возбудителя всеми доступными лабораторными методами исследования. Она не заменима, когда требуется получение результатов в максимально короткие сроки и при использовании материала без выделения вируса в чистой культуре.

Своевременная  лабораторная диагностика позволяет вовремя выявить возбудителя инфекций и правильно поставить диагноз, что предотвращает массовое заболевание и возможный падеж восприимчивого поголовья.

Бешенство – типичная зоонозная инфекция, возбудитель которой передается прямым контактным путем в результате укуса или ослюнения поврежденных наружных слизистых оболочек или кожного покрова. К бешенству восприимчивы все теплокровные животные, в том числе и человек.

Поэтому необходимо вовремя и в кратчайшие и сроки поставить правильный диагноз. Для этого необходимы экспресс- методы диагностики: люминесцентная микроскопия, световая микроскопия, иммуноферментный анализ. Проведение исследований занимает не более 6 часов. Положительный результат, бесспорно, подтверждает диагноз, отрицательный – требует дополнительных методов исследования.

 Семинар на тему «Вирусные болезни свиней. Лабораторная диагностика бешенства» с ветеринарными  врачами- бактериологами районных и межрайонных ветеринарных лабораторий будет проведен 25 февраля 2014 года на базе БУ УР «Удмуртский ветеринарно- диагностический центр».

Материалы семинара помогут вет. врачам лучше ориентироваться в диагностике вирусных болезней свиней, закрепить  практические навыки  работы по  лабораторной диагностике бешенства.

Программа семинара

[attachment=24]

  С начала 2014 года  в отдел бактериологии на исследование поступило 26 проб мяса от вынужденно-убитых животных.

      Из 22-х проб говядины были выделены следующие возбудители токсикоинфекции:  15 культур из группы кишечной палочки, 18 культур кокковой микрофлоры, 2 культуры анаэробной инфекции (Clostridiumperfringens), патогенной для морских свинок  и 1 культура Proteusvulgaris.

     Из 4-х проб свинины  выделены 3 культуры кокковой микрофлоры и 1 культура из группы кишечной палочки.

     В свободную реализацию такое мясо  не допускается и  подвергается  термической обработке, а в случае обнаружения возбудителей сибирской язвы и анаэробной инфекции — сжигается.

      У 8 проб говядины и 2 проб свинины  были установлены биохимические показатели (РН, пероксидаза, мутность и аромат бульона), соответствующие забою  больных животных, либо забитых в агональном состоянии.  Такие туши  подвергаются  утилизации.

       В связи с вышеперечисленным хочется предупредить население,  что не следует приобретать мясо на несанкционированных рынках и  у случайных лиц, т. к. оно может вызвать тяжелое пищевое отравление.

Директор БУ УР «УВДЦ» Коротаев П.В. планирует принять  участие в цикле семинаров на тему: «Пути повышения конкурентоспособности ветеринарных лабораторий на рынке услуг», который состоится 24-26 февраля 2014 г. в г. Санкт-Петербург. Семинар проводится на базе Европейского Учебно-Консультационного Центра при поддержке Литовского национального института оценки рисков продовольствия и ветеринарии, латвийского научного института пищевой безопасности, здоровья животных и окружающей среды «BIOR», Ассоциации аналитических центров «Аналитика» РФ, ВНИИ Метрологии им. Менделеева, Межрегионального фонда развития лабораторного дела РФ. В семинаре примут участие ведущие специалисты ветеринарных лабораторий РФ. 

18.02.2014 г в актовом зале БУ УР «УВДЦ» состоялось совещание по подведению итогов работы БУ УР «УВДЦ» за 2013 год и задачам на 2014 год, в котором приняли участие специалисты БУ УР «УВДЦ», представители межрайонных ветеринарных лабораторий УР и райСББЖ. От ГУВ УР присутствовали начальник Бурдов Г.Н. и начальник ФЭО Ахметов Ф.Ф. Участники совещания заслушали доклады заместителя директора БУ УР «УВДЦ», главного метролога, и.о. главного бухгалтера, начальника юридического отдела. Докладчики озвучили основные моменты диагностической работы учреждения, были рассмотрены вопросы по метрологическому обеспечению, финансовой деятельности, результаты договорной работы и работы с дебиторской задолженностью. О результатах работы в целом по учреждению  выступил с докладом директор  Коротаев П.В. Руководитель БУ УР «УВДЦ»  озвучил основные моменты работы учреждения в области финансового обеспечения учреждения, органа по сертификации пищевых продуктов и кормов, испытательного центра и планы работы на 2014 год.  Заслушав докладчиков, по подведению итогов отчетного периода выступил начальник ГУВ УР Бурдов Г.Н. Работа  БУ УР «УВДЦ» за 2013 г. в целом была признана удовлетворительной. Бурдов  Г.Н. пожелал дальнейшего развития и совершенствования БУ УР «УВДЦ».

В зимний период  при скученном содержании животных в хозяйствах могут быть зарегистрированы вспышки сифункулятза (вшивость). Это заболевание вызывается паразитирующими на теле животных насекомыми.  Известно около 300 видов вшей. Все они специфичны для разных видов хозяев.

       Вши являются постоянными паразитами животных. Всю свою жизнь они проводят на теле хозяина. Здесь же они и размножаются , проходя стадии яйца, личинки и взрослого насекомого. Питаются вши кровью животных 2-3 раза в сутки, поглощая за один раз 0,7-2 мг крови. Живут взрослые насекомые 1-2 месяца.

       При кровососании вши вводят в ранку  ядовитый секрет слюнных желез, вызывающий раздражение и зуд кожи. Сильно пораженные животные истощены,, слабы и малокровны, количество эритроцитов уменьшается на 43%, количество гемоглобина падает на 20-30%.  Кроме того, вши способствуют проникновению в организм животных различных микробов.

       Что бы не допускать вшивости животных, следует содержать животных в чистых сухих помещениях, предоставлять им моцион.  Регулярно осматривать кожный покров, чистить или обмывать водой. Пораженных вшами животных не перемещать в другие хозяйства и фермы. Обработки инсектицидами проводить дважды с интервалом 10-14 дней.

В настоящее время трудно представить зимние рационы животных без силоса. Этот корм улучшает их пищеварение, удовлетворяет потребность в витаминах и минеральных веществах. Кроме того, силос значительно повышает аппетит у животных, чему способствуют его специфический вкус и аромат. Силос может сохраняться длительное время с наименьшими потерями питательных веществ. Доброкачественный силос по своей питательности и биологической ценности не уступает зелёной траве. В силосованном корме количество протеинов, жиров, клетчатки, минеральных веществ и каротина почти не изменяется. В целом силос высокого качества оказывает положительное влияние на молочную продуктивность коров.

В силосе должно содержаться не более 2,5% (1,8-2,8%) органических кислот при величине рН в пределах 3,9-4,3, основная часть которых должна быть представлена молочной кислотой (65-75%), содержание уксусной кислоты — 25-35%, масляная кислота отсутствует, аммиачного азота не более 10% от общего количества азота корма.

Качество используемого силоса часто не соответствует зоотехническим требованиям, что приводит нарушению синтеза микробиального белка в рубце за счет подавления в нем развития полезной микрофлоры. При этом наблюдается накопление в рубце молочной кислоты, снижение рН рубцового содержимого, нарушение пищеварения. В результате может наступить ацидоз, заболевание копыт и суставов, ухудшение качества молока, проявится мастит и другие заболевания.

При хранении в силосе идут различные процессы, в зависимости от условий хранения и развития тех или иных бактерий, качество корма может изменятся.

Под действием молочнокислых бактерий в силосе образуется молочная кислота. В кислой среде гибнут гнилостные и маслянокислые бактерии, постепенно затухает ферментативный процесс — в результате корм хранится практически без потерь. Эффективность брожения и сохранность силоса характеризуется соотношением молочной и уксусной кислот не менее 3:1. Часто же наблюдаемое на практике соотношение 1:1. В процессе жизнедеятельности дрожжей и грибов образуется  уксусная и масляная кислоты, ацетон и другие продукты распада. При развитии гнилостных и маслянокислых бактерий образуется масляная кислота, наличие которой более 30% делает корм непригодным для скармливания животным.

При скармливании животным силоса необходимо следить за его нормой и придерживаться следующих правил. Силос должен быть хорошего качества, так как очень кислый или испорченный силос вызывает у животного диарею. При открытии новой партии корма, необходимо силос сдавать на исследования — определение органолептических показателей (цвет, запах, консистенция), содержание органических кислот.

Для проведения анализа отбор проб силоса необходимо проводить не ранее 30 суток после герметичного укрытия массы, заложенной в хранилище, и не позднее, чем за 15 суток до начала скармливания. Образец должен отражать среднее состояние корма во всем бурте. Желательно взять несколько проб из разных частей ямы и объединить их в сборный образец. Недопустимо брать силос на анализ из окисленной поверхностной зоны или из кормушки. В наиболее упрощенном случае можно взять сборный образец при раскрытии ямы или очередном заборе силоса для кормления. Образец плотно укладывают в полиэтилен, выдавливают весь воздух. Доставка в лабораторию осуществляют  в течение суток с момента отбора, хранить его нужно в холоде. Одновременно с пробой силоса отправляют сопроводительную, где указывают хозяйство, название корма, дату взятия образца, условия хранения, место нахождения,

Только правильно отобранные и усредненные пробы дают правдивые результаты.

В лабораторию определяют внешние признаки доброкачественности силоса, влажность, активную кислотность (рН), количество и соотношение органических кислот (молочной, уксусной и масляной), содержание каротина.

Контролируя химические показатели силоса, Вы можете своевременно нейтрализовать органические кислоты и улучшить качество корма, минимизировать отрицательное действия их на организм животных, избежать потери в продуктивности.